產(chǎn)品簡介

Axon 膜片鉗放大器

 從單通道記錄到大型宏記錄均適用的膜片鉗放大器

Axon Instruments?系列放大器為全系列膜片鉗實驗提供yi流的解決方案。放大器系列包括適用于超低噪音單通道記錄的 Axopatch? 200B、適用于全細胞電壓鉗和高速電流鉗記錄的 MultiClamp? 700B，以及適用于雙電極電壓鉗和電流鉗記錄的 Axoclamp? 900A。

功能特點

高效冷卻的探頭

Axopatch 200B 放大器具備可提供高效前置放大器冷卻功能的ZG技術，可降低接近物理學理論限值的電氣噪音。

支持多達 4 個探頭

MultiClamp 700B 支持多達 2 個 CV-7B 主探頭以及 2 個可選的輔助探頭（HS-2 或 VG-2 類型），可實現(xiàn)針對細胞網(wǎng)絡研究的多通道記錄。

多種操作模式

Axoclamp 900A 放大器提供 5 種操作模式：電流鉗、非連續(xù)性電流鉗、雙電極電壓鉗、非連續(xù)性單電極電壓鉗、高電壓電流鉗。

通過軟件控制進行設置

MultiClamp 700B 和 Axoclamp 900A 放大器提供軟件控制功能。軟件控制功能可簡化設置過程，并可實現(xiàn)參數(shù)、訊號交互以及高級方案的自動化。

廣泛的輸出兼容范圍

Axoclamp 900A 放大器支持更大電流的測量，并可確保更快的鉗制速度（在 TEVC 和 HVIC 模式下 ±180V）。

與所有數(shù)據(jù)采集系統(tǒng)兼容

該放大器系列可與大多數(shù)數(shù)據(jù)采集程序集成。用于進行數(shù)據(jù)采集和分析的 pCLAMP? 11 軟件和 DigiData? 1550B 系統(tǒng)可提供優(yōu)異的性能。

應用

單通道記錄

膜片鉗技術涉及與細胞膜形成牢固千兆歐姆封接的玻璃微電極。玻璃微電極中含有一根浸入電解溶液中的導線，用于傳導離子。要測定單離子通道，則在形成千兆歐姆封接后將膜的“膜片”與細胞分離。如果單離子通道在膜片內(nèi)，則可測量電流。Axopatch 200B 具備極低噪音特性，非常適用于此應用，可大大度增強很小的傳導性離子通道信號。

離子通道

離子通道是一組跨越細胞脂質(zhì)雙層并形成孔道的蛋白質(zhì)。每個通道僅對特定離子具有通透性（例如：鉀、鈉、鈣、氯）。通過使用超靈敏放大器、高質(zhì)量數(shù)據(jù)采集系統(tǒng)以及用于評估結果的強大軟件進行直接實時測定，以使用膜片鉗評估與離子通道活動有關的膜中的電流或電壓。

膜片鉗

膜片鉗技術涉及與細胞膜形成牢固千兆歐姆 (GΩ) 封接的玻璃微電極。玻璃微電極中含有一根浸入電解溶液中的導線，用于傳導離子。全細胞技術涉及通過溫和抽吸來破壞膜片以提供低阻電信號接入，從而控制跨膜電壓。或者，研究者可將膜片與細胞分離并利用膜內(nèi)向外或膜外向外膜片鉗技術來評估通過單通道的電流。

全細胞記錄

全細胞膜片鉗技術涉及與細胞膜形成牢固千兆歐 (GΩ) 封接的玻璃微電極。該微電極含有一根浸入電解溶液中的導線，用于傳導離子。隨后通過溫和抽吸來破壞膜片，以便玻璃微量移液管提供通向全細胞的低電阻通路，從而讓研究者能夠控制跨膜電壓，并讓研究者能夠評估通過膜結合離子通道的電流總量。

串聯(lián)電阻補償

串聯(lián)電阻是使用全細胞記錄方法測得的放大器和細胞內(nèi)部之間所有電阻的和。根據(jù)歐姆定律，該電阻越大，命令電壓和測量值之間的差值就越大。這使得實際電壓或電流測量值出現(xiàn)誤差，可能會導致觀察結果不準確。為了克服這個缺點，Molecular Devices 放大器利用內(nèi)置電路來補償因串聯(lián)電阻下的電壓或電流下降引起的誤差，以增加記錄帶寬。

電壓鉗放大器

在一項使用電壓鉗方法的實驗中，研究者控制細胞內(nèi)的膜電壓，并測量為了保持該電壓而需要的跨膜電流。該電壓控制稱為命令電壓。為了保持該命令電壓，必須向放大器注入電流。注入的電流將與通過開放離子通道流出的電流相等且方向相反，從而使放大器能夠測量流過開放膜結合離子通道的電流量。

電流鉗放大器

電流鉗是一種用于測量因電流注入而產(chǎn)生的膜電位（電壓）的方法。為了測量膜電位，MultiClamp 700B 和 Axoclamp 900A 均監(jiān)測沿串聯(lián)電阻器進行的電流注入所引起的電壓下降。電流鉗通常用于將模擬但逼真的電流波形注入細胞，并監(jiān)測膜效應。該技術非常適用于評估動作電位等重要細胞活動。