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Ni-TED Agarose Resin 6FF(His標簽蛋白瓊脂糖高速純化樹脂)
- 品牌:翌圣生物
- 產(chǎn)地:
- 供應(yīng)商報價:面議
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翌圣生物科技(上海)股份有限公司
更新時間:2024-12-24 09:03:45
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銷售范圍售全國
入駐年限第1年
營業(yè)執(zhí)照已審核
- 同類產(chǎn)品蛋白純化(155件)
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詳細介紹
Ni-TED Agarose Resin 6FF以高度交聯(lián)的6%瓊脂糖凝膠為基質(zhì),通過化學(xué)方法偶聯(lián)三(羧甲基)乙二胺(TED)為配體,螯合鎳離子(Ni2+)而制備成的一種介質(zhì)。Ni-TED Agarose Resin 6FF與Ni2+具有5個螯合位點,使得其對于 Ni2+具有很強的約束力,這一特性賦予了本品具有優(yōu)異的 DTT 以及 EDTA 耐受性。本品用于帶有 His 標簽的蛋白純化時擁有穩(wěn)定性高、復(fù)雜環(huán)境中一步純化蛋白、目標蛋白質(zhì)吸附量大(但會低于Ni-NTA)、蛋白洗脫條件溫和、介質(zhì)易再生、重復(fù)利用率高等優(yōu)點。
產(chǎn)品性質(zhì)
基質(zhì)
高度交聯(lián)的6%瓊脂糖凝膠
粒徑
45-165 µm
載量
>15 mg His-tagged protein(27.5 KD)/mL基質(zhì)
耐壓
0.3 MPa,3 bar
儲存緩沖液
20%乙醇
PH穩(wěn)定性
4-10 (工作);2-14(CIP)
化學(xué)穩(wěn)定性
24 h耐受10 mM EDTA,5 mM DTT, 5 mM TCEP,20 mM β-巰基乙醇,1 M NaOH,6 M 鹽酸胍 ;2 h耐受500 mM咪唑,100 mM EDTA
運輸和保存方法
冰袋運輸。2-8℃保存。有效期4年。
注意事項
- 為了您的安全和健康,請穿實驗服并戴一次性手套操作。
- 本產(chǎn)品僅作科研用途!
使用方法
- 純化流程
1 緩沖液的準備
緩沖液使用原理:低咪唑上樣,高咪唑洗脫。Buffer 在使用前最好用0.22 µm或0.45 µm濾膜過濾除菌。
平衡緩沖液:20 mM PB,0.5 M NaCl,pH 7.4
洗雜緩沖液:20 mM PB,0.5 M NaCl,0-30 mM 咪唑,pH 7.4
洗脫緩沖液:20 mM PB,0.5 M NaCl,50-500 mM 咪唑,pH 7.4
2 樣品準備
在上樣前將宿主細胞碎片通過離心等方式去除,7000 rpm離心15 min,收集上清。然后過 0.45um 的微孔濾膜。為了獲得最大的載量,不要在樣品蛋白溶液中添加咪唑。
3 裝柱
1)用去離子水沖洗層析柱底篩板與接頭,確保柱底篩板上無氣泡,關(guān)閉柱底出口,并在柱底部留出1-2 cm的去離子水。
2)將樹脂懸浮,小心地將漿液連續(xù)地倒入層析柱中。用玻璃棒沿著柱壁倒入漿液可減少氣泡的產(chǎn)生。
3)如果使用儲液器,應(yīng)立即在層析柱和儲液器中加滿水,將進樣分配器放置于漿液表面,連接至泵上,避免在分配器或進樣管中產(chǎn)生氣泡。
4)打開層析柱底部出口,開啟泵,使其在設(shè)定的流速下進行。最初應(yīng)讓緩沖液緩慢流過層析柱,然后緩慢增加至最終流速,這樣可避免液壓對所形成柱床的沖擊,也可以避免柱床形成的不均勻。如達不到推薦的壓力或流速,可以用所用泵的最大流速,這樣也可以達到一個較好的裝填效果。當柱床高度穩(wěn)定后,在最后的裝柱流速下至少再上3倍柱體積的去離子水。標上柱床高度?!咀ⅰ吭陔S后的色譜程序中,不要超過最大裝柱流速的75%。
5)關(guān)閉泵,關(guān)閉層析柱出口。
6)如使用儲液器,去除儲液器,將分配器置于層析柱中。
7)將分配器推向柱子至標記的柱床高度處。允許裝柱液進入分配器,鎖緊分配器接頭。
8)將裝填好的層析柱連接至泵或色譜系統(tǒng)中,開始平衡。如需要可重新調(diào)整分配器。
4 樣品純化
裝柱后,可用各種常規(guī)的中壓色譜系統(tǒng),以AKTA使用為例進行說明:
1)將泵管道注滿去離子水。去掉產(chǎn)品上塞,連接至色譜系統(tǒng)中,打開下出口,將純化柱連接到色譜系統(tǒng)中,注意旋緊。
2)3-5倍柱體積去離子水沖洗純化柱。
3)至少5倍柱體積的平衡緩沖液平衡色譜柱。1 mL規(guī)格預(yù)裝柱推薦流速為1 mL/min,5 mL預(yù)裝柱推薦流速為5 mL/min。
4)利用泵或注射器上樣,收集流出液,以便SDS-PAGE檢測蛋白結(jié)合情況?!咀ⅰ咳魳悠氛扯仍黾?,即使上樣體積很少也會導(dǎo)致層析柱很大反壓;上樣量不要超過柱子的結(jié)合能力;大量樣品體積也可能造成很大的反壓,使得進樣器更難使用。
5)洗雜緩沖液沖洗柱子,直到紫外吸收達到一個穩(wěn)定的基線(一般至少10-15個柱體積)。
【注】在樣品和結(jié)合緩沖液中加入低濃度咪唑可以提高樣品純度。
6)洗脫緩沖液一步法或梯度法進行洗脫。一步法洗脫中一般5倍柱體積洗脫液即可。梯度洗脫可以用一個小的梯度,例如20倍柱體積或更多來分離不同結(jié)合強度的蛋白質(zhì)。
7)隨后依次用2倍柱體積的1 mol/L NaOH和5倍柱體積的去離子水清洗填料。5倍柱體積的20%乙醇平衡樹脂,最后將填料保存在20%乙醇的1×PBS中,置于4 ℃保存。
5 SDS-PAGE檢測
將純化過程中得到的樣品(包括原始樣品、流出組分、洗雜及洗脫組分等)利用SDS-PAGE進行檢測,判定其純化效果。
二、在位清洗
當填料使用過程中發(fā)現(xiàn)反壓過高或者填料上面出現(xiàn)明顯的污染時,需對其進行在位清洗(Cleaning-in-Place,CIP)。建議按照下面操作去除填料上殘留的污染物,如沉淀蛋白、疏水蛋白和脂蛋白等。
1 去除強疏水結(jié)合的蛋白,脂蛋白和脂類
使用30%異丙醇清洗5-10個柱體積,接觸時間為15-20 min可以去除此類污染物。之后再用去離子水清洗10倍柱體積。也可以選擇使用含有去污劑的酸性或者堿性溶液清洗填料2倍柱體積。例如含有0.1-0.5%非離子去污劑的0.1 M醋酸溶液,接觸時間為1-2 h。去污劑處理后,需用70%的乙醇清洗5倍柱體積,徹底去除去污劑。最后利用去離子水清洗10倍柱體積。
2 去除離子作用結(jié)合的蛋白
使用1.5 M NaCl 溶液接觸10-15 min,之后用去離子水清洗10倍柱體積。
HB221104
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